سنتز سبز و مشخصه یابی کود نانو کربن دات آهن و مطالعه انکوباسیونی آن در یک خاک آهکی

نوع مقاله : مقاله کامل علمی پژوهشی

نویسندگان

1 دانشجوی دکتری گروه علوم خاک، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران.

2 دانشیار، گروه علوم خاک، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران.

3 استاد، گروه بیومتریال، نانوتکنولوژی و مهندسی بافت، دانشگاه علوم پزشکی اصفهان، اصفهان، ایران.

4 استادیار ، گروه بیومتریال، نانوتکنولوژی و مهندسی بافت، دانشگاه علوم پزشکی اصفهان، اصفهان، ایران.

5 عضو هیات علمی، بخش تحقیقات خاک و آب، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی اصفهان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی اصفهان.

چکیده

سابقه و هدف: بارزترین مشکلات خاک‌های آهکی کمبود آهن است. نانو کودها گزینه مناسبی برای رفع نیاز گیاه با کارایی بالا هستند. هدف از این مطالعه سنتز سبز کود نانو کربن دات آهن به دو صورت بدون پوشش و پوشش‌دهی شده با پلیمر پلی لاکتیک اسید و مطالعه انکوباسیونی این کودها در یک دوره یک ماهه در خاک آهکی بود.

مواد و روش‎ها: سنتز سبز نمونه نانو کربن دات آهن با استفاده از آب لیمو (به عنوان پایه کربنی کود) و کود سولفات آهن هفت آبه به روش هیدروترمال صورت گرفت. نمونه نانو کربن دات آهن سنتز شده به وسیله پلیمر پلی لاکتیک اسید پوشش‌دهی شد و نمونه‌های آزمایشی پس از سنتز جهت تایید بارگذاری آهن روی نمونه کربن دات و همچنین تایید پوشش‌دهی موفق کود نانو کربن دات آهن سنتز شده به وسیله دستگاه‌های UV، XRD،Fluorescent Spectrophotometric، TEM، FESEM، EDAX، FTIR، DLS و ZetaPotential مشخصه یابی شدند. به منظور بررسی اثر نانو کربن دات آهن سنتز شده بر فراهمی آهن دریک خاک آهکی، آزمایش انکوباسیونی در دمای 1± 22 درجه سلسیوس و رطوبت ظرفیت زراعی به صورت طرح کاملا تصادفی در 3 تکرار انجام شد. تیمارها شامل شاهد (بدون کاربرد نانو کربن دات)، سولفات آهن، سکوسترین (تجاری) و نانو کربن دات آهن سنتز شده بارگیری شده با آهن (به صورت دو تیمار جدا بدون پوشش و با پوشش با پلیمر پلیلاکتیک اسید) در سطوح 5، 10 و 20 میلی‌گرم آهن در کیلوگرم خاک (در مجموع 9 تیمار با 3 تکرار) بودند. در پایان دوره انکوباسیون (720 ساعت)، میزان آهن قابل عصاره‌گیری خاک با DTPA تعیین شد. همچنین به منظور بررسی روند تغییرات آهن قابل استخراج خاک با DTPA با زمان، مقادیر آهن عصاره‌گیری شده در خاک با DTPA در سه زمان 3 ، 360 و 720 ساعت در تیمارهای شاهد بدون کود، تیمار 5 میلی‌گرم در کیلوگرم خاک آهن خالص از منابع مختلف آهن (سولفات آهن، سکوسترین، نانو کربن دات بدون پوشش، نانو کربن دات پوشش دار) با همدیگر مقایسه شدند.

یافته‏ها: بارگذاری موفق آهن روی سطح نانو کربن دات‌های آهن بدون پوشش و پوشش‌دهی شده با پلیمر پلی لاکتیک اسید توسط دستگاه‌های XRD، UV-VIS، FTIR و میکروسکوب‌های الکترونی روبشی وعبوری تایید شدند. میزان آهن کل در نمونه بدون پوشش معادل 98/4 درصد و در نمونه پوشش‌دهی شده با پلی لاکتیک اسید معادل 1 درصد بود. نتایج حاصل از انکوباسیون نشان داد که در مدت زمان یک ماه آهن قابل عصاره گیری در خاک با DTPA در سطح یک درصد افزایش معنی‌داری داشت. بیشترین غلظت آهن در خاک در پایان 720 ساعت (30 روز) مربوط به نمونه پوشش‌دهی شده نانو کربن دات آهن با پلیمر پلی لاکتیک اسید (Fe-CD-Coated) با غلظت آهن 20 میلی گرم بر کیلوگرم برابر با 58/9 میلی گرم بر کیلوگرم بود. همچنین با بررسی روند تغییرات آزاد سازی آهن در تیمارهای با غلظت 5 میلی گرم بر کیلوگرم در سه بازه زمانی 3، 360 و 720 ساعت مشاهده شد که تیمار پوشش‌دهی شده موجب افزایش قابل ملاحظه آهن نسبت به تیمار سکوسترین آهن شد. تیمار سکوسترین آهن بعد از 720 ساعت نسبت به 3 ساعت اولیه حدود 60 درصد افزایش داشت (از 19/5 به 28/8 میلی گرم بر کیلوگرم) در حالی که مقدار آهن عصاره گیری شده با DTPA در تیمار پوشش‌دهی شده نانو کربن دات آهن در این بازه زمانی حدود 400 درصد افزایش داشت (از36/1 به 63/6 میلی گرم بر کیلوگرم).
نتیجه‏گیری: با توجه به نتایج پژوهش می‌توان گفت که در بین تیمارهای آزمایشی با توجه به رها سازی آهسته آهن، نمونه پوشش‌دهی شده با پلیمر طبیعی و زیست تخریب پذیر پلی لاکتیک با غلظت آهن 20 میلی گرم بر کیلوگرم بیشترین رها سازی آهن را نسبت به سایر تیمارها داشت .

کلیدواژه‌ها

موضوعات


عنوان مقاله [English]

Green synthesis and characterization of iron nano carbon dot fertilizer and its incubation study in a calcareous soil

نویسندگان [English]

  • Yasman Zilabpour 1
  • Mojtaba Barani Motlagh 2
  • Mohammad Rafieinia 3
  • Elham Bidram 4
  • Mojtaba Yahyaabadi 5
1 Gorgan University of Agricultural Sciences and Natural Resources, Golestan, Iran. Email
2 Associate Professor, Soil Science Department, Gorgan University of Agricultural Sciences and Natural Resources, Gorgan, Iran.
3 . Department of Modern Medical Technologies, Isfahan University of Medical Sciences, Isfahan, Iran.
4 Department of Modern Medical Technologies, Isfahan University of Medical Sciences, Isfahan, Iran
5 Member of Scientific Board, Soil and Water Research Division, Esfahan Agricultural and Natural Resources Research Center, AREEO, Esfahan, Iran
چکیده [English]

Background and Objectives: The most obvious problem of calcareous soils is lack of plant available iron. Nano fertilizers are a suitable option to meet the needs of the plant with the high efficiency. The aim of this study was the green synthesis of nanocarbon dot iron fertilizers in two forms, uncoated and coated with polylactic acid polymer, and the incubation study of these fertilizers in a period of one month in a calcareous soil.

Materials and Methods: The green synthesis of iron nano carbon dot sample was done using lemon juice (as the carbon base of fertilizer) and Ferrous sulfate heptahydrate by hydrothermal method and the iron nano carbon dot sample was synthesized by polylactic acid polymer coating and test samples after synthesis to confirm the loading of iron on the carbon dot sample and also to confirm the successful coating of the synthesized iron nano carbon dot fertilizer by means of UV, XRD, Fluorescent Spectrophotometric, TEM, FESEM, EDAX, FTIR, DLS and Zeta Potential were characterized. In order to investigate the effect of synthesized iron nanocarbon dot on the availability of iron in a calcareous soil, an incubation experiment was conducted in a completely random design in 3 replications. The treatments include control (without nano carbon dot application), iron sulfate, sequestrin (commercial) and synthesized iron nano carbon dot loaded with iron (as two separate treatments without coating and coated with polylactic acid polymer) at levels 5, 10 and 20 mg Fe kg-1 soil (total of 9 treatments with 3 replications). At the end of the incubation period (720 hours), the extractable iron content of the soil was determined with DTPA. Also, in order to investigate the changes in the extractable iron of soil with DTPA with time, the amount of iron extracted in soil with DTPA in three times of 3, 360 and 720 hours in control treatments without fertilizer, treatment of 5 mg kg-1 soil iron soil from different sources of iron were compared with each other.

Results: The successful loading of iron on the surface of nano-carbon iron dots without coating and coated with polylactic acid polymer was confirmed by XRD, UV-VIS, FTIR and scanning and transmission electron microscopes. The amount of total iron in the uncoated sample was equal to 4.98% and in the sample coated with polylactic acid it was equal to 1%. The results of the incubation showed that extractable iron in the soil with DTPA increased significantly.The highest concentration of iron in the soil at the end of 720 hours is related to the sample coated with iron nano carbon dot with polylactic acid polymer with an iron concentration of 20 mg kg-1 equal to 9.58 mg kg-1. Also, by examining the changes in iron release in treatments with a concentration of 5 mg kg-1 in three time periods of 3, 360 and 720 hours, it was observed that the coated treatment caused a significant increase in iron compared to the iron sequestrin treatment. Iron sequestrin treatment after 720 hours compared to the first 3 hours increased by about 60% (from 5.19 to 8.28 mg kg-1), while the amount of iron extracted with DTPA in the nano carbon dot iron coated treatment In this period of time, it increased by about 400% (from 1.36 to 6.63 mg kg-1).

Conclusion: According to the results of the research, it can be said that among the experimental treatments regarding the slow release of iron, the sample coated with natural and biodegradable polylactic polymer with an iron concentration of 20 mg kg-1has the highest iron release compared to had other treatments,

کلیدواژه‌ها [English]

  • green synthesis
  • Iron nano carbon dot fertilizer
  • polylactic acid
  • coated
  • Incubation
1.Raun, W. R., JoKhodakovskaya, M., Dervishi, E., Mahmood, M., Xu, Y., Li, Z., Watanabe, F., & Biris, A. S. (2009). Carbon nanotubes are able to penetrate plant seed coat and dramatically affect seed germination and plant growth. ACS Nano, 3, 3221-3227. doi:10.1021/ nn302965w.
2.Chinnamuthu, C. R., & Boopathi, P. M. (2009). Nano technology and agroecosystem. Madras Agricultural Journal, 96, 17-31. doi.org/10.4172/ 2325-9655.1000101.
3.Scott, N., & Chen, H. (2003). Nanoscale science and engineering for agriculture and food systems, A Report Submitted to Cooperative State Research, Education, and Extension Service the USDA National Planning Workshop November 18-19, 2002 Washington, DCCornell University. doi.org/10.1089/ind.2012.1549.
4.Kale, S. N., Mona, J., Dhobale, S., Thite, T., & Laware, S. L. (2011). Intramolecular and intermolecular crosslinked polyvinyl alcohol–borate complexes for the sustained release of fertilizers and enzymes. Journal of Applied Polymer Science, 121, 2450-2457. doi.org/ 10.1002/ app.33776.
5.Fleischer, A., Neill, M. A., & Ehwald, R. (1999). The pore size of non-graminaceous plant cell wall is rapidly decreased by borate ester cross-linking of the pectic polysaccharide rhamnogalacturonan II. Plant Physiology, 121, 829-838. doi.org/ 10.1104/pp.121. 3.829.
6.Carpita, N., Sabulase, D., Montezinos, D., & Delmer, D.P. (1979). Determination of the pore size of cell.walls of living
plant cells. Science, 205, 144-147. doi: 10.1126/science.205.4411.1144.
7.Fernandez, V., & Eichert, T. (2009). Uptake of hydrophilic solutes through plant leaves: current state of knowledge and perspectives of foliar fertilization. Critical Reviews in Plant Sciences, 28, 36-68. doi.org/10.1080/ 0735268090 2743069.
8.Chu, K., Lee, S., Chang, C., & Liu, L. (2019). Recent Progress of Carbon Dot Precursors and Photocatalysis Applications. Polymers, 11 (4), 1-31. doi.org/10.1080/ 07352680902743069.
9.Xu, X., Ray, R., Gu, Y., Ploehn, H. J., Gearheart, L., Raker, K., & Scrivens, W.A. (2004). Electrophoretic analysis and purification of fluorescent single-walled carbon nanotube fragments. Journal of the American Chemical Society, 126, 12736-12737. doi.org/10.1021/ja040082h.
10.Wang, H., Zhang, M., Song, Y., Li, H., Huang, H., Shao, M., Liu, Y., & Kang, Z. (2018). Carbon dots promote the growth and photosynthesis of mung bean sprouts. Carbon, 136 (94), 1-34. doi.org/10.1016/j.carbon.2018.04.051.
11.Liu, Y., Shen, Y. T., Sun, L. T., Li, J. C., Liu, C., Ren, W. C., Li, F., Gao, L. B., Chen, J., Liu, F. C., Sun, Y. Y., Tang, N. J., Cheng, H. M. D., & U, Y. W. (2016). Elemental superdoping of graphene and carbon nanotubes. Nature Communications, 7, 1-9. doi:10.1038/ncomms10921.
12.Khodakovskaya, M., Kim, B. S., Kim, J. N., Alimohammadi Dervishi, M. E., Mustafa, T., & Cernigla, C. E. (2013). Carbon nanotubes as plant growth regulators: effects on tomato growth, reproductive system, and soil microbial community. Small, 9, 115-123. doi:10.1002/smll.201201225.
13.Lu, C. M., Zhang, C. Y., Wen, J. Q., Wu, G. R., & Tao, M. X. (2002). Research on the effect of nanometer materials on germination and growth enhancement of glycine max and its mechanism. Soybean Science, 21, 68-172. doi: 10.4236/oje.2021.114022.
14.Canas, J. E., Long, M., Nations, S., Vadan, R., Dai, L., Luo, M., Ambikapathi, R., Lee, E. H., & Olszyk, D. (2008). Effects of functionalized and nonfunctionalized single-walled carbon nanotubes on root elongation of select crop species. Environmental Toxicology and Chemistry, 27, 1922-1931. doi: 10.1897/08-117.1.
15.Yang, F., Hong, F., You, W., Chao, L., Gao, F., Wu, C., & Yang, P. (2006). Influence of nano-anatase TiO2 on the nitrogen metabolism of growing spinach. Biological Trace Element Research, 110, 179-190. doi: 101385/ BTER: 110: 2: 179.
16.Hong, F., Zhou, J., Liu, C., Yang, F., Wu, C., Zheng, L., & Yang, P. (2005). Effect of nano-TiO2 on photochemical reaction of chloroplasts of spinach. Biological Trace Element Research, 105, 269-279. doi:10.1385/ BTER: 105:1-3:269.
17.Mahajan, P., Dhoke, S. K., & Khanna, A. S. (2011). Effect of nano-ZnO particle suspension on growth of mung (Vigna radiata) and Gram (Cicerarietinum) seedlings using plant agar method. Journal of Nanotechnology, doi:10.1155/2011/ 696535.
18.Mikkelsen, R. L. (1995). Using hydrophilic polymers to improve uptake of manganese fertilizers by soybeans. Fertilizer Research, 41, 87-92. doi: 10.1007/bf00750749.
19.Mikkelsen, R. L. (1994). Using hydrophilic polymers to control nutrient release. Fertilizer Research, 38, 53-59. doi:10.1007/bf00750749.
20.Raiesi, T., Mamani, L., Chorom, M., & Moezzi, A. (2022). Improved iron use efficiency in tomato usingorganically coated iron oxide nanoparticlesas efficient bioavailable Fe sources. Chemical and Biological Technologies in Agriculture. doi.org/10.1186/ s40538 -022-00318-y.
21.Marschner, H. (1995). Mineral Nutrition of Higher PlantsAcademic Press. London. 649p.
22.Briat, J.F., Dubos, C., & Gaymard, F. (2015). Iron nutrition, biomass production, and plant product quality. Trends in Plant Science, 20 (1), 33-40. doi.org/10.1016/j.tplants.2014.07.005.
23.Malakouti, M. J., Karimian, N. A., & Keshavarz, P. (2006). Diagnosis and recommendation integrated system for balanced fertilization. Tarbiat Modarres University press.
24.Mortvedt, J. J. (1986). Iron sources and management practices for correcting iron chlorosis problems. Journal
of Plant nutrition
, 6, 674-961. doi:10.1080/ 01904168609363496.
25.Mazaherinia, S., Astarayi, A. R., Fatut, A., & Manshi, A. (2010). Effect of iron oxide (nano and normal) with granular sulfur compost on Fe concentrations and growth of wheat plants Attila. Farming Research of Iran, 8 (5), 855-861.
26.Ghafari, H., & Razmjoo, J. (2018). Response of durum wheat to foliar application of varied sources and
rates of iron fertilizers. Journal of Agricultural Science and Technology, 17, 321-331. hdl.handle.net/ 123456789/ 4230.
27.Peyvandi, M., Parande, H., & Mirza, M. (2011). Comparison of nano Fe chelate with Fe chelate effect on growth parameters and antioxidant enzymes activity of Ocimumbasilicum. New Cellular and Molecular Biotechnology Journal, 4, 89-99. ncmbjpiau.ir/article-1-53-en.html.
28.Saleem, I., Maqsood, M., Rehman, A., Ur, M. Z., Aziz, T., Bhatti, I. A., & Ali, S. (2021). Potassium ferrite nanoparticles on DAP to formulate slow release fertilizer with auxiliary nutrients. Ecotoxicology and Environmental Safety, 215, 112148. doi:10.1016/ j.ecoenv.2021.112148.
29.Tadesse, A., Hago, M., Roma Devi, D., Basavaiah, K., & Belachew, N. (2020). Fluorescent-Nitrogen- Doped Carbon Quantum Dots Derived from Citrus Lemon Juice: Green Synthesis, Mercury (II) Ion Sensing, and Live Cell Imaging. ACS Omega, 5 (8), 3889-3898. doi.org/ 10.1021/acsomega.9b03175.
30.Pakkath, S., Chetty, S., Selvarasu, P., Murugan, A., Kumar, Y., Periyasamy, L., Santhakumar, M., Sadras, S., & Santhakumar, K. (2018). Transition Metal Ion (Mn2+, Fe2+, Co2+, and Ni2+)‑Doped Carbon Dots Synthesized via Microwave-Assisted Pyrolysis: A Potential Nanoprobe for Magneto-fluorescent Dual-Modality Bioimaging. ACS Biomaterials Science & Engineering, 4 (7), 2582-2596. doi.org/ 10.1021/acsbiomaterials.7b00943.
31.Farrington, D. W., Lunt, J., & Blackburn, R. S. (2005). Poly (lactic acid) Fibres, Biodegradable and Sustainable
Fibres, CRC, England. Chap 6, 30. doi.org/10.1016/j.indcrop.2019.05.040.
 
32.Harada, M., Ohya, T., Iida, K., Hayashi, H., Hirano, & Kand Fukuda, H. (2007). Increased impact strength of biodegradable poly (lactic acid)/poly (butylenes succinate) blend composites by using isocyanate as a reactive processing agent. Journal of Polymer Science, 106, 1813-1820. doi.org/ 10. 1002/app.26717.
33.Lassalle, V., & Ferreira, M. L. (2007). PLA Nano- and Microparticles for Drug Delivery: An Overview of the Methods of Preparation. Macromolecular Bioscience, 7, 767-783. doi.org/10. 1002/ mabi.200700022.
34.Hong, R., Pan, T., Qian, J., & Li, H. (2006). Synthesis and surface modification of ZnO nanoparticles. Chemical Engineering Journal, 119, 71-81. doi.org/10.1016/j.cej.2006.03.003.
35.Olsen, S. R., & Sommers, L. E. (1982). P. 403-430. In: A. L. Page (Ed.). Methods of soil Analysis, Agron. No. 9, Part 2: Chemical and microbiological properties. American Society. Agronomy. Madison WI, USA.
36.Lateef, A., Nazir, R., Jamil, N., Alam, S., Shah, R., Naeem Khan, M., Saleem, M., & Rehman, S. (2019). Synthesis and characterization of environmental friendly corncob biochar based nano-composite. A potential slow release nano-fertilizer for sustainable agriculture. Environmental Nanotechnology, Monitoring and Management, 11, 1532-2215. doi.org/10.1016/j.enmm.2019.100212.
37.Lindsay, W. L., & Norvell, W. A. (1978). Development of a DTPA soil test for zinc, iron, manganese, and copper. Soil Science Society of America Journal, 42 (3), 421-428. doi.org/10.2136/sssaj1978.
38.Sparks, D. L. (1996). Methods of soil analysis Madison: SSSA, ASA Publishing Takahashi, F., Mizoguchi, T., Yoshida, R., Ichimura, Kand Shinozaki, KF2011 Calmodulin-dependent activation of MAP kinase for ROS homeostasis in Arabidopsis. Molecular Cell. 41, 649-660.
39.Li, J., Ma, S. H., Xiao, X., & Zhao, D. (2019). The One-Step Preparation of Green-Emissioned Carbon Dots through Hydrothermal Route and Its Application. Journal of Nanomaterialspp, 1-10. doi.org/10.1155/2019/8628354.
40.Huang, Q., Liu, Y., Zheng, L., Wu, L., Zhou, Chen, J., Chen, W., & Zhao, H. (2019). Biocompatible iron(II)-doped carbon dots as T1-weighted magnetic resonance contrast agents and fluorescence imaging probes. Microchimica Acta,
7, 767-783. doi: 10.1007/s00604-019-3593-4.
41.Tripathi, S., Sonkar, S. K., & Sarkar, S. (2011). Growth stimulation of gram (Cicer arietinum) plant by water soluble carbon nanotubes. Nanoscale, 3 (3), 1176-1181. doi: 10.1039/C0NR00722F.
42.Wang, L., Li, W., Wu, B., Li, Z. P., & DWu, M. (2016). Facile synthesis of fluorescent graphene quantum dots from coffee grounds for bioimaging and sensing. Chemical Engineering Journal, 300, 75-82. doi.org/10.1016/ j.cej.2016. 04.123.
43.Qu, D., Zheng, M., Zhang, L., Zhao, H., Xie, Z., Jing, X., Haddad, R. E., Fan, H., & Sun, Z. (2013). Formation mechanism and optimization of highly luminescent N-doped graphene quantum dots. Scientific Reports, 4 (1), 1-11. doi: 10.1038/srep05294.
44.Joseph, T., & Morrison, M. (2006). Nanotechnology in agriculture and food. Institute of Nanotechnology. 84, 1-13. ISBN, 978, 3030-31938-0.
45.Zhu, Sh., Song, Y., Zhao, X., Shao, J., Zhang, J., & Yang, B. (2015). The photoluminescence mechanism in carbon dots (graphene quantum dots, carbon nanodots, and polymer dots): Current state and future perspective. Nano Research, 8 (2), 355‐81. doi: 10.1007/s12274-014-0644-3.
46.Lohrke, J., Briel, A., & Mäder, K. (2008). Characterization of superparamagnetic iron oxide nanoparticles by asymmetrical flow-field-flow-fractionation. Nanomedicine, 3, 437-452. doi.org/10.2217/ 17435889. 3.4.437.
47.Chung, S., & Zhang, M. (2021). Microwave-Assisted Synthesis of Carbon Dot – Iron Oxide Nanoparticles for Fluorescence Imaging and Therapy. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, 9, 1-12. doi.org/ 10.3389/ fbioe.2021.711534.
48.Swarnkar, R. K., Singh, S. C., & Gopal, R. (2011). Effect of aging on copper nanoparticles synthesized by pulsed laser ablation in water structural and optical characterizations. Bulletin of Materials Science, 34 (7), 1363-1369. doi:10.1007/s12034-011-0329-4.
49.Adriano, D. C. (2001). Trace Elements in the Terrestrial Environments: Biogeochemistry, Bioavailability and Risks of Heavy Metals. 2nd ed., Springer-Verlag, New York, 867p.
50.Azeem, B., Kushaari, K., Man, Z. B., Basit, A., & Hanh, T. H. (2014). Review on materials & methods to produce controlled release coated urea fertilizer, Journal of Controlled Release. 181, 11-21, doi.org/10.1016/j.jconrel.2014.02.020.
51.Xu, Sh., Li, X., Wang, Y., Hu, Z., & Wang, R. (2018). Characterization of slow-release collagen-g-poly(acrylic acid- co- 2- acrylamido- 2-methyl-1-propane sulfonic acid)–iron(III) superabsorbent. polymer containing fertilizer. Journal of Applied Polymer Science, 136, 47178-47188. doi.org/10.1002/ app.47178.
52.Khadem, A., Gholchin, A., Shafiee, S., & Zare, A. (2014). Effect of manures and sulfure on nutrients uptake of corn. Applied Field Crop Research. 103, 1-10. doi.10.22092/aj.2014.101198.